Protocolo de tinción intracelular para citometría de flujo
Las células deben ser fijados para mantener la estabilidad de las proteínas intracelulares. Un número de agentes de fijación se puede utilizar tal como formaldehído o acetona enfriada con hielo . Después de la fijación , la membrana de la célula necesita ser permealized para permitir que el anticuerpo entre en la célula . Los detergentes tales como Triton o NP- 40 , o el helado de metanol se puede utilizar para hacer agujeros en la membrana de la célula .
Tinción
Lavar las células en el tampón de bloqueo 0,5 por ciento de albúmina de suero bovino diluido en solución salina tamponada con fosfato , BSA /PBS . Las células se incubaron en tampón de bloqueo para reducir la unión no específica . Añadir anticuerpo primario diluido en tampón de bloqueo y dejar en incubación a temperatura ambiente , para la longitud de tiempo optimizado . Lavar con tampón de bloqueo.
Análisis
incuba el anticuerpo secundario , que está marcado con una etiqueta fluorescente, a temperatura ambiente durante 30 minutos. Para eliminar las células de lavado de anticuerpos no unidos en tampón de bloqueo . Haga girar las células en un pellet y resuspender en PBS y analizar el citómetro de flujo.